1．貼壁細胞
1) 取普通潔淨盖玻片于70%乙醇中浸泡5分鍾或更長時間，無菌超淨台內吹幹或用細胞培養PBS或0.9%NaCl等溶液洗滌三遍，再用細胞培養液洗滌一遍。將盖玻片置于六孔板內，種入細胞培養過夜，使約爲50%-80%滿。
2) 刺激細胞發生凋亡後，吸盡培養液，加入0.5ml固定液，固定10分鍾或更長時間（可4℃過夜）。
3) 去固定液，用PBS或0.9%NaCl洗兩遍，每次3分鍾，吸盡液體。洗滌時宜用搖床，或手動晃動數次。
4) 加入0.5ml Hoechst 33258染色液，染色5分鍾。也宜用搖床，或手動晃動數次。
5) 用PBS或0.9%NaCl洗兩遍，每次3分鍾。
6) 滴一滴抗荧光淬滅封片液于載玻片上，盖上貼有細胞的盖玻片，盡量避免氣泡。使細胞接觸封片液，切勿弄反。
7) 荧光顯微鏡可檢測到呈藍色的細胞核。
2. 懸浮細胞
1) 離心收集細胞樣品于1.5ml離心管內，加入0.5ml固定液，緩緩懸起細胞，固定10分鍾或更長時間（可4℃過夜）。
2) 離心去固定液，用PBS或0.9%NaCl洗兩遍，每次3分鍾。洗滌期間手動晃動。
3) zui後一次離心後吸去大部分液體保留約50ml液體，再緩緩懸起細胞，滴加至載玻片上，盡量使細胞分布均勻。
4) 稍晾幹，使細胞貼在載玻片上不易隨液體流動。
5) 均勻滴上0.5ml Hoechst 33258染色液，染色5分鍾。用吸水紙從邊緣吸去液體，微晾幹。
6) 用PBS或0.9%NaCl洗兩遍，每次3分鍾。
7) 滴一滴抗荧光淬滅封片液于載玻片上，盖上一潔淨的盖玻片，盡量避免氣泡。
8) H. 荧光顯微鏡可檢測到呈藍色的細胞核。
3. 組織切片
1) 常規包埋切片後，脫蠟，透明。
2) PBS或0.9%NaCl洗兩遍，每次3分鍾，吸盡液體。洗滌時宜用搖床，或手動晃動數次。可在六孔板中操作。
3) 加入0.5ml Hoechst 33258染色液，染色5分鍾。也宜用搖床，或手動晃動。
4) 用PBS或0.9%NaCl洗兩遍，每次3分鍾。
5) 將切片置于載玻片上，滴一滴抗淬滅封片液，盖上一潔淨的盖玻片，盡量避免氣泡。
6) 荧光顯微鏡可檢測到呈藍色的細胞核。