對潮黴素B Hygromycin B的抗性基因：
對潮黴素B的抗性源自編碼潮黴素B磷酸轉移酶(Hph)的基因。至今發現兩種來源：
1.Streptomyces hygroscopicus產生的Hph抗性基因;
2.Escherichia coli，Klebsiella pneumoniae內質粒攜帶的Hph抗性基因(常用);
潮黴素B Hygromycin B的生物應用：
1) 篩選和維持培養穩定轉染Hph+載體的原核細胞或真核細胞(植物細胞和哺乳動物細胞);
2) 由于作用模式的差異，常與G418 (GeneticinTM)，Zeocin™ 和blasticidin S聯合使用，篩選穩定轉染兩個不同載體的細胞株;
3)抗病毒劑，由于潮黴素B選擇性滲透進入病毒感染增強通透性的細胞，而且具有抑制翻譯的功效;
4)作爲驅蟲藥加入動物飼料;
應用濃度：
潮黴素B用來篩選穩轉株的工作濃度需要根據細胞類型，培養基，生長條件和細胞代謝率而變化。推薦使用濃度爲50-1000 μg/mL，濃度需要殺滅曲線來確定。
哺乳動物細胞·200-500 μg/mL;細菌/植物細胞·100-300 μg/mL;真菌·300-1000 μg/mL;
潮黴素B Hygromycin B的兩種使用方法如下：
使用一：殺滅曲線確定殺死濃度(僅作參考，因個人檢測體系而異)
(1)往組織培養級的96孔板內加入未轉染細胞，細胞密度約50-200細胞/孔;細胞貼壁之後，往每孔加入含不同濃度(如50-1000μg/mL，至少5個濃度)潮黴素B的200μL新鮮培養基;
(2)37℃，5% CO2培養箱孵育細胞10-14天;
(3)培養5-7天後更換新的培養液，培養液內含有相應濃度的潮黴素B;
(4)10-14天後使用細胞增殖方法如MTT，CCK-8等評估細胞活力;也可以通過檢測細胞克隆數或百分比彙合率來確定毒性效應。一般選擇在10-14天能夠殺死所有細胞的小濃度爲篩選濃度。
使用二：篩選穩定轉染細胞
(1) 對于貼壁細胞，直接吸去60mm培養皿內的轉染細胞培養基，然後加入含有潮黴素B的新鮮培養基5-6ml;對于懸浮細胞，無菌條件250x g,離心10min除去舊的轉染細胞培養基，然後懸浮在約5ml的含潮黴素B的新鮮培養基;
(2) 5-7天後，如上方法更換含有潮黴素B的新鮮培養基;
(3) 再孵育細胞5-7天;
(4) 10-14天孵育後，培養體系中只含有能夠表達潮黴素B抗性表型的活細胞。因此篩選之後如步驟一，更換不含潮黴素B的新鮮培養基。